MICROSCOPÍA, TÉCNICA HISTOLÓGICA Y ANÁLISIS DE IMÁGENES

El Instituto de Morfología y Patología Animal (IMPA) cuenta con un laboratorio de histología y equipamiento de microscopía que permiten ofrecer servicios de procesamiento de muestras, adquisición y análisis de imágenes a investigadores, grupos y organizaciones externas a la institución.

Correo electrónico: impa.fcv.unlp@gmail.com

Intagram: @impafcvunlp

TÉCNICAS Y CAPACIDADES DISPONIBLES

Microscopía óptica

Microscopía convencional: Campo claro (brightfield) y campo oscuro (Darkfield).

  • Observación e imagen de preparados histológicos con coloraciones estándar (H&E, Masson, PAS, Giemsa, entre otras).
  • Adquisición de imágenes de alta resolución para documentación, publicación y análisis cuantitativo.

DIC: Contraste de interferencia diferencial (DIC / Nomarski).

  • Visualización de detalles topográficos de superficie celular con alto contraste sin necesidad de tinción.
  • Ideal para imágenes de material no teñido o mínimamente preparado (secciones semifinas, cultivos celulares).

Polarización: Microscopía de luz polarizada.

  • Detección y análisis de materiales birrefringentes: fibras colágenas, cristales minerales, osteonas, celulosa.

Contraste de fases: Contraste de fases (Phase Contrast).

  • Visualización de material transparente sin tinción aprovechando diferencias en índice de refracción: células vivas, cultivos celulares (consultar objetivos disponibles).

Microscopía de fluorescencia: Epifluorescencia.

  • Detección de fluoróforos y sondas fluorescentes en preparados fijos o cultivos.
  • Cubos de fluorescencia disponibles para DAPI/Hoechst, FITC/Alexa 488, TRITC/Alexa 546 y otras combinaciones según consulta.
Microscopía confocal láser

CLSM: Microscopía confocal de barrido láser estándar (CLSM).

  • Imágenes en un único canal o en múltiples canales fluorescentes.

Z-stacks: Adquisición de pilas Z y reconstrucción 3D.

  • Generación de series de secciones ópticas a intervalos controlados en el eje Z.
  • Reconstrucciones volumétricas de estructuras subcelulares, vasculares, nerviosas u óseas.

Multicanal: Imágenes multicanal (hasta 4 canales simultáneos).

  • Adquisición secuencial o simultánea de hasta cuatro fluoróforos por preparado o más usando canales virtuales.

Colocalización: Análisis de colocalización de fluoróforos.

Tejidos 3D: Imaging de tejidos gruesos y preparados 3D.

  • Penetración óptica en secciones gruesas (> 50 µm).
  • Compatible con tejidos clarificados (CLARITY, iDISCO, etc) para imaging de órganos o porciones de órganos.
Técnica histológica
  • Inclusión en parafina y corte.
  • H&E y colorantes tradicionales.
  • Histoquímica, Inmuno-Lectinhistoquímica.
Análisis de imágenes
  • Análisis descriptivo de material normal.
  • Microfotografías y micromorfometría.
  • Análisis estadístico de resultados.

MICROSCOPÍA, TÉCNICA HISTOLÓGICA Y ANÁLISIS DE IMÁGENES
Scroll hacia arriba